medios de cultivo in vitro

Physicochemical properties of mixtures of inorganic supporting m aterials affect growth of potato (Solanum tuberosum L.) plantlets cultured photoautotrophically in a nutrient-circulated micropropagation system. El experimento se realizó en el Laboratorio de Biotecnología y Patología de Semillas del Campus Montecillo, Colegio de Postgraduados. La reducción de los costos de producción podría lograrse con el uso de sustratos hidropónicos (perlita, vermiculita, fibra de coco), ya que pueden ser una alternativa para sustituir los agentes gelificantes caros. [ Links ], Murashige, T. and Skoog, F. 1962. Los resultados de este trabajo muestran que medios menos concentrados que contenían sales MS al 50% no limitaron el crecimiento de los brotes de Laelia anceps Lindl. Abstr. endstream endobj 648 0 obj <>/Outlines 13 0 R/Metadata 28 0 R/PieceInfo<>>>/Pages 27 0 R/PageLayout/OneColumn/StructTreeRoot 30 0 R/Type/Catalog/LastModified(D:20080330174757)/PageLabels 25 0 R>> endobj 649 0 obj <>/ColorSpace<>/Font<>/ProcSet[/PDF/Text/ImageC/ImageI]/ExtGState<>>>/Type/Page>> endobj 650 0 obj <> endobj 651 0 obj <> endobj 652 0 obj <> endobj 653 0 obj <> endobj 654 0 obj <> endobj 655 0 obj [/Indexed 656 0 R 166 670 0 R] endobj 656 0 obj [/ICCBased 669 0 R] endobj 657 0 obj <> endobj 658 0 obj <> endobj 659 0 obj <> endobj 660 0 obj <> endobj 661 0 obj <>stream En relación con estos resultados, el efecto del genotipo en el crecimiento in vitro también se observó en Cattleya aurantiaca Bateman, Encyclia adenocaula La Llave & Tex., Laelia speciosa Kunth., Epidendrum radicans Pav. [ Links ], Fujiwara, K. C.; Yamauchi, T. and Kozai, K. 1993. [ Links ], Bhagwat, B.; Vieira, L. G. E. and Erickson, L. R. 1996. y Epidendrum sp. � 67:341-346. 108:105-120. Outbreaks grown on perlite-volcanic rock or coir-volcanic rock, and médiums with 50% salts and AG3 showed no significant difference in terms of length, number of leaves, number of roots and fresh weight, with respect to those grown in agar, 100% salts without AG3. endstream endobj 662 0 obj <>stream entera a partir de un cultivo in vitro sin importar el grado de diferenciación alcanzado. El cultivo in vitro consiste en tomar una porción de una planta (ej. y Epidendrum sp.después de 45, 90 y 135 días de cultivo.Â. ��3�������R� `̊j��[�~ :� w���! De esta manera se logró la multiplicación in vitro de 45 variedades de plantas correspondientes a 18 géneros distintos de plantas ornamentales y hortícolas, resultando seleccionados 27 medios de cultivos de los muchos ensayados, resultando de los ensayos de campo una producción de 120.000 plantines de alta calidad en tierra. hޜ�wTT��Ͻwz��0�z�.0��. 0000015272 00000 n 1994. -���E�2ı�D���q�^�R����V�=����)t:�km(�[s����O�y�_�8��b,��ö �G��%�aw����>���;�h��ư�K#�آݣj �FU��8����a���~�>֎��5���Q��/e� ^՚9&?��z3�o�(�����i�hCe���,�R�öJe����Uؚ��e�b��R �./}�.�6�%9�9m7a�4R�5!��a��x��T8F6�G6^E6zPn.�,�m�Ld�-A������w���'� �;t� El cultivo in vitro de plantas puede utilizarse en otras formas: crear semillas artificiales, plantas sin enfermedades, ni daños de ningún tipo, híbridos, perfeccionamiento de plantas a través de su genética, y otros. Se usó un diseño experimental completamente al azar con tres factores: especie (2), sustratos (3) y medio de cultivo (4) resultando 24 tratamientos. 25-may-2020 - Explora el tablero de Lourdes de la Mora "CULTIVO IN VITRO" en Pinterest. Formulación de un medio de cultivo anaerobio / Ley De Coss, A. y col. _____ 48 y 72 h de incubación, sin llegar a una CDA. 46:1-7. de fosfatos de calcio y hierro. Stimulation of root growth of several vegetables by extracts from a commercial preparation of agar. Sn�nI��L"�v�6gk�n�|�$����5��h2�>��LQ���lz[�[�,b����-U�4(��3���J����c �Π mH�� ��sԆ%�_*���k������Dr;oZ0a���+�i;4:9Q��@�BRR��e�A��Z�z�A0��둩l��悉��s�T� 0 4�t� MATERIALES Y MÉTODOS. Cuadro 4 Efecto de los sustratos en la longitud de brote,número de hojas y número de raíces a los 45, 90 y 135 días iniciado el cultivo Â, Figura 1 Brotes adventicios de Laelia anceps Lindl. 0000016984 00000 n endstream endobj 669 0 obj <>stream [ Links ], Ávila, D. I. y Salgado, G. G. R. 2006. En medios sólidos se emplearon placas de agar con cada compuesto fosfatado, además de un testigo sin No obstante, el costo de los materiales utilizados en la elaboración de los medios de cultivo es alto, especialmente del agente gelificante (agar o phytagel) que puede representar hasta 70% del costo de las plantas. 0000005417 00000 n Efecto del medio de cultivo in vitro y la fuente nitrogenada sobre el crecimiento del Cocuy (Agave cocui TRELEASE). (Eds. En caso de que la información facilitada no baste [...] para identificar [...] totalmente un componente (como los condensados, medios de cultivo, etc. Se establecieron los tratamientos a partir del medio básico MS sólidos, modificando las concentraciones de nitratos y sacarosa (tabla 1). En contraste, Rodrigues et al. (2007) utilizaron cuatro medios (MS 50%, MS 100%, medio Morel, medio Knudson para la germinación in vitro de Chloraea virescens (Willd.) [ Links ], Afreen, Z. F.; Zobayed, S. M. A. C.; Kubota, T.; Kozai, O. and Hasegawa, A. 56230. 67:19-26. Los medios de cultivo evaluados para el crecimiento de brotes adventicios de Laelia anceps Lindl. 1999. Asimismo, sólo el número de raíces de los brotes crecidos en MS al 100% fue significativamente menor que el de aquellos que permanecieron en el medio MS al 50% y AG3 después de 90 y 135 días de iniciado el cultivo (Cuadro 5). RESULTADOS Y DISCUSIÓN Establecimiento in vitro Se consiguió el cultivo in vitro por semillas de todas las orquídeas en estudio. 0000004860 00000 n Evaluación de medios de cultivo in vitro para especies forestales nativas en peligro de extinción en Ecuador Por su parte, Flores-Escobar et al. Posterior a la inducción, los callos de los diferentes explantes fueron transferidos a un medio de cultivo MS, sin reguladores de crecimiento, suplementado con 30 g L-1 de sacarosa y mantenidos durante 60 días en cámara de incubación, con un fotoperiodo de 16 h luz. 0000002784 00000 n 2001. respondió mejor que Epidendrum sp. trailer Â. Estos resultados concuerdan con los obtenidos por Martínez-Hernández et al. H����j�0��~�9ڇ�J#ɒ!�M�-�[�N)=�m�P�)4��~G�ʱ]ɻjYƣf�_��������B��WW����[���on�姚4J+SW6?�����;_m��/ �#F�yt���+ٶ�o��(������V=U[4���(���ڠp�l�H7�a�¡j'�Lod�0/�-�ښ�o�t��d��Rtaɯ�X(�/�ܐ���ҥa�.YJ}���kQ���&��,fԸ����"�e��Ib%�5F��X�b%� /�i,��d��;u3�ܙ*Z�N9I�;��.��Ra� �'��ϸ%#���� 24:39-44. Propagation ornamental plants. A. y Barrientos, R. F. 2013. Asimismo, sólo se encontraron diferencias significativas entre los brotes de L. anceps Lindl. ��������ϐ�oZ���[����S�r�ˊ��oX}�>�z�hƊg{{�<3�!�` p�wC y���{54T+�jԿ�`cڐ�Qj �\�AGZ)�7q��A���ν_x��%���^�e����=#zm|�):��.�������eNf��s��W�/�45s�0����#πhvmh�FwX�������8q�T�X~�`tl���"�A�Mq:�q���]�êW������cG"ۑ(�V,:� ��ze}���R�Ő]��P����'����:_��£��SW�%���PUV�HP�G��n�щ١��ayP�����6s�f��%m�F�x���P�ͪ����@�d��X(9�ːVE�q�P%�@��@�� ��Y|���ä�D5��$����(�T�I���.h��#�oj'�nh��;����T�=jj�!��E����ܓ,;R��T= 볭�����"�h�P롷.g磭�"F�ę3��B�y2��б3�'x���㴱�����X�^[�t-�%�b��m��G�ZX]�dH94�'��>��x�� �^�–�I�KCpT+�n����}a#Q��c��d. Diagnóstico de la familia Orchidaceae en México.Universidad Autónoma Chapingo (UACH). �{���D-1��-\�����w�I��h���gM\�,4�?���t%X;y+M��5'�q���E�H��U*�������qj�9H����x1�� '\�v{6JL��yM{�J.�9fH̎�g�js�yFɤ3��l;u�P�T_'�N��(,�N>_��%�;��-{O;ۍXm��lq��C�r��Zɳo/�3�PS2�Fv�X�n�Y/e��q4D��0F�.@�uDEZU0x#I.{��]����s���0��Z5��O��P(gn8��_�']|���h�{��ӗ���h����'v��? Por otra parte, Xiao y Kozai (2006) probaron un material poroso (Florialite) alternativo al agar en el crecimiento de Limonium latifolium Lindl. [ Links ], Kataoka, I. �[�Ϛ$�Pb�\��o�Gc��m�$%����w)ӒU��T9�ʉɓ��Z�/���ꁌ�d�+]?G2��%yu�>I��3'���v�&C�/�E6�{���^�5�s��t�V�i��7����K��%3�;�` Xqu� Technol. Por otro lado, no existieron diferencias significativas para el número de hojas formadas en los brotes de L. anceps Lindl. En su acepción amplia, el cultivo de tejidos vegetales se define como un conjunto muy heterogéneo de técnicas que presentan en común el hecho de que un explanto —o sea, una parte separada del vegetal, tales como protoplastos, células, tejidos u órganos— se cultiva asépticamente en un medio artificial de composición química definida y se incuba en condiciones ambientales controladas. Laelia anceps Lindl. En general se ha obtenido un 100% de germinación utilizando el medio completo MS, con o sin reguladores de crecimiento, al cultivarlas en condiciones de luz. Efecto de medios de cultivo en el crecimiento in vitro de Oncidium bifolium sims. Por su parte, Afreen-Zobayed et al. El pH de los medios se ajustó a 5.7-5.8. Tema en 'Cultivo in vitro de orquídeas' comenzado por ranchu, 2/3/07. [ Links ], Rodrigues, S. J. D.; Gomes, A. I. El término “cultivo in vitro de tejidos” significa cultivar algunas partes de las plantas también llamados “explantes”, como segmentos de hoja, tallo y raíces, además de otros tejidos u órganos vegetales, dentro de un frasco de vidrio en un ambiente artificial, en los que deben de controlarse la asepsia, el crecimiento y el desarrollo de estos diferentes tejidos. La sangre no puede ser esterilizada, y por tanto debe de ser obtenida en condiciones asépticas Rev. H��VMs�F���#��� �W��U�V�R*�d�8+�L�c��z %ʯO��HZ"�`����ׯ���&޾�\�_n���w�����C��8��Y���� ���AVD�!��k|����/�v݊GA1�� :����,S�g�&y�$�:K�گ6�{[�����B��߇r�����)˦,�-�Z�Y�1(+��!���4`�{*�E����w�?7�/n�,��~~yG�G�^�����������_��?�_)i�2J�l"6'�O��e�@���������>�T!�}�d2���-߬����W�;y)=�ϟxXdDjl1rb�w��~��lki�@�Jz��u�wwq��%���0���r��c����[Y�e u�"��8�[���3 A los 135 días se observó que sólo los brotes de L. anceps Lindl. MEDIOS DE CULTIVO Mezcla de sales minerales Macronutrientes: N, P, K, Ca, Mg, S Micronutrientes: Cu, Fe, Mn, Co, Cl, Fuente de carbono (energa) Sacarosa Glucosa. endstream endobj 664 0 obj <>stream endstream endobj 666 0 obj <>stream 1:1-7. De la misma manera, Kozai (2010) y Oh et al. Midland Nat. Mex. Los medios de cultivo son sustratos tanto líquidos como sólidos que aportan los nutrientes necesarios y las condiciones abióticas (pH, concentración de sales, humedad, etc.) En investigaciones desarrolladas sobre el tema de diferenciación celular, Gottlieb Haberlandt en 1898 aisló células y tejidos de plantas superiores y las colocó en soluciones nutritivas para su crecimiento y estudio, dando origen de esta manera a la técnica de cultivo de células y tejidos vegetales. Protection of roots by cellulose plugs. [ Links ], Labrousse, P.; Delmail, D.; Decou, P.; Carlúe, M.; Lhernould, S. and Krausz, P. 2012. Technol. Se forma entonces una estructura de callo, de la que parten brotes, o también proembriones, que al unirse forman una estructura similar al embrión. (2000) observaron que los tratamientos a base de agar en la micropropagación de Ipomoea batatas L. quedaron por debajo de los tratamientos a base de vermiculita y pulpa de papel. Letras distintas en una columna indican diferencias estadísticas significativas (Tukey ≤ 0.05). (2006) quienes evaluaron la germinación, multiplicación y enraizamiento de Citrus volkameriana Ten & Pasq., Citrumelo swingle (Citrus Paradise Macfad cv. México tiene una gran diversidad en especies animales y vegetales, cuidar y preservar tal diversidad es muy importante. A partir de entonces se desarrolla normalmente. Cultivo in-vitro de Desarrollo aseptico de protoplastos, células , tejidos u órganos vegetltales en un medio de cultivo , tan definido como sea posible y que se mantenga bajo condiciones ambientales controladas . 40:408-411. y Epidendrum sp. Orquídeas. De igual forma si esta interesado en curso In-vitro no dude en preguntar por nuestro diferentes servicios. Los brotes adventicios se colocaron en frascos de vidrio de 250 ml que contenían 30 ml de los medios de cultivo descritos anteriormente más los sustratos PT, FCT o agar (Cuadro 1). El propósito de este trabajo fue informar, por primera vez, la presencia de Ochrobactrum anthropi como contaminante del cultivo in vitro de células y tejidos de caña de azúcar. Plant Physiol.65:186-192. Lo anterior indica que los brotes de L. anceps Lindl. En Orquídeas. A.; Carrillo, G. C.; Pedraza, S. M. E.; Corona, T. T.; Carrillo, S. A. y Alcántar, G. G. 2011. El análisis de los resultados reflejó que la especie tuvo un efecto significativo en la longitud del brote (45, 90 y 135 días), el número de hojas (45 días) y el número de raíces (90 y 135 días) (Cuadro 2). J. Japan Soc. de los tratamientos con sales MS al 50%, AG3 y agar (MS50-2A) y sales MS al 100% con agar (MS100-A) fue estadísticamente mayor que la de los otros tratamientos. Esta presión, aunada a la destrucción de su hábitat, ha provocado la disminución acelerada de sus poblaciones (Halbinger y Soto, 1997; Romero-Tirado et al., 2007). en Epidendrum sp. Para Epidendrum sp. los tratamientos MS100FCT y MS50-2FCT indujeron un menor número de raíces.

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